真空采血管的性能(néng)驗證
日期:2019-01-30 / 人氣:
ICS 11.020 C 50
WS
中(zhōng)華人民(mín)共和國(guó)衛生行業标準WS/T 224—2018
代替 WS/T 224—2002
真空采血管的性能(néng)驗證
Performance verification of vacuum tubes for venous blood specimen
2018 - 04 - 27 發布 2018 - 11 - 01 實施中(zhōng)華人民(mín)共和國(guó)國(guó)家衛生健康委員會 發 布
前言
WS/T 224—2018
I
1 範圍
本标準規定了真空采血管性能(néng)要求及驗證方法。
本标準适用(yòng)于臨床實驗室在正式使用(yòng)新(xīn)采血管前對其進行性能(néng)驗證。對正在使用(yòng)的采血管的檢測結 果有(yǒu)疑問、查找原因可(kě)能(néng)與采血管相關時,也可(kě)采用(yòng)本标準對采血管進行性能(néng)驗證。
2 規範性引用(yòng)文(wén)件
下列文(wén)件對于本文(wén)件的應用(yòng)是必不可(kě)少的。凡是注日期的引用(yòng)文(wén)件,僅注日期的版本适用(yòng)于本文(wén)件。 凡是不注日期的引用(yòng)文(wén)件,其最新(xīn)版本(包括所有(yǒu)的修改單)适用(yòng)于本文(wén)件。
GB/T 6682 分(fēn)析實驗室用(yòng)水規格和試驗方法
3 術語和定義
下列術語和定義适用(yòng)于本文(wén)件。
在一個标本采集管中(zhōng),添加的任何促進一個預定功能(néng)(如防止凝血或糖酵解)的試劑。注:盡管容器蓋不被認為(wèi)是一種添加劑,但它可(kě)能(néng)含有(yǒu)或塗覆添加劑,若它們進入标本中(zhōng)接觸,應被認為(wèi)是添加劑。
檢測結果的預期值與可(kě)接受值之間的差異。
WS/T 224—2018
真空采血管的性能(néng)驗證
1
WS/T 224—2018注:管蓋的作(zuò)用(yòng)使采血後容器的口部與外界形成隔離以确保安(ān)全,一般管蓋内部還有(yǒu)一個能(néng)與容器口部形成密封的
密閉容器的組件。塞體(tǐ)以保護血樣,本标準稱其為(wèi)管蓋而不稱其為(wèi)塞子,目的是突出其安(ān)全作(zuò)用(yòng)。
3.7
3.8
3.10
采血管附加物(wù) receptacle accessory
生産(chǎn)者放于采血管内部,以有(yǒu)助于采集、混合或分(fēn)離樣品的部件。示例:放入血清或血漿采血管中(zhōng)的小(xiǎo)型塑料惰性球(或分(fēn)離膠),用(yòng)于離心後從血液中(zhōng)分(fēn)離血清或血漿。
研究中(zhōng)實際觀測或調查的一部分(fēn)個體(tǐ)。通過檢查、研究和分(fēn)析樣本的特征來反映總體(tǐ)情況。
3.12
驗證 verification
通過提供客觀證據對規定要求已得滿足的認定。注:終端用(yòng)戶(臨床實驗室)有(yǒu)責任驗證制造商(shāng)生産(chǎn)的器械性能(néng)。
4 真空采血管的性能(néng)驗證4.1 外觀
重量測定分(fēn)析法 gravimetric analysis
通過稱重和校正液體(tǐ)的質(zhì)量密度測定液體(tǐ)體(tǐ)積的方法。注:本文(wén)件中(zhōng),以1000mL水的質(zhì)量為(wèi)1000g。
抽吸量 draw volume,DV
從靜脈穿刺處負壓吸至真空采血管中(zhōng)的血液的體(tǐ)積。注:在标準條件(溫度18°C~25°C,标準大氣壓)下,真空采血管采水到平衡時的總重量。
2
WS/T 224—2018試管應透明,無異物(wù);試管無變形和破損;标識應清晰(真空采血管标簽及管蓋顔色國(guó)際通用(yòng)标準
參見附錄A);管蓋無脫落;采血管内的分(fēn)離膠的膠體(tǐ)應呈凝膠狀。
4.2 抽吸量4.2.1 要求
抽吸量應準确,抽吸量與公(gōng)稱液體(tǐ)容量的相對偏倚應在-10%~10%之間。
4.2.2 驗證方法4.2.2.1 試劑
水,符合GB/T 6682的三級水的要求,溫度在18°C~25°C。
4.2.2.2 儀器
500mL燒杯;考察管;濾紙;分(fēn)析天平;20G(内徑38mm)标準雙向軟連接采血針。
4.2.2.3 取樣
采用(yòng)一次抽樣方案取樣,随機抽取30支,按照标準操作(zuò)進行采水,記錄相關數據。
4.2.2.4 步驟(重量測定分(fēn)析法)
a) 将 500mL 的燒杯裝(zhuāng)滿水;
b) 将 1~30 支管進行編号且稱重,這為(wèi)采血管的初始重量,記為(wèi) Wi1,其中(zhōng) i 為(wèi) 1~30;
c) 将采血針的靜脈穿刺針(穿透一個純膠塞)浸入盛滿水的燒杯中(zhōng),另一端的管塞穿刺針刺穿真 空采血管的膠塞進行采水,保持采血管的高度與水液面的高度大緻一緻,采水達到平衡時拔管;
d) 依次将編号為(wèi) 1~30 的采血管進行采水,注意燒杯内水的液面高度與采血管的液面高度保持在 同一水平線(xiàn)上;
e) 采水完畢,用(yòng)濾紙吸取膠塞表面可(kě)能(néng)殘留的水分(fēn);
f) 然後将采水後編号為(wèi) 1~30 的采血管進行稱重,這是真空采血管采水後的重量,記為(wèi) Wi2,其 中(zhōng) i 為(wèi) 1~30;
- g) 抽吸量的計算見式(1):DV=( W i 2 - W i1 )/N ................................. (1)
式中(zhōng):
Wi1----采血管的初始重量,單位為(wèi)克(g);Wi2----采血管采水後的重量,單位為(wèi)克(g);i ----自然數編号,範圍為(wèi)1~30;
DV----抽吸量,單位為(wèi)克(g);N ----檢測對象的總量,即 N=30。注:本标準中(zhōng),以 1000mL 水的質(zhì)量為(wèi) 1000g。 h) 抽吸量與公(gōng)稱液體(tǐ)容量之間的相對偏差(relative deviation,簡寫為(wèi) RD),其計算見式(2):3
NN i1 i1
WS/T 224—2018RD=(DV-NLC)/NLC×100% ................................. (2)
4.3 管體(tǐ)強度4.3.1 要求
采血管在水平式離心機下應能(néng)承受 3000g 的相對離心力,即測試采血管在充裝(zhuāng)水至刻度線(xiàn)的條件 下,用(yòng)水平式離心機采用(yòng) 3000g 的相對離心力,離心 10min 而不發生破裂或洩露。
4.3.2 驗證方法4.3.2.1 試劑
水,符合GB/T 6682的三級水的要求,溫度在18°C~25°C。
4.3.2.2 儀器
500mL燒杯;水平離心機,最大能(néng)提供5000g相對離心力。
4.3.2.3 步驟
a) 随機抽取 30 支采血管充裝(zhuāng)水至刻度線(xiàn),并保持采血管外觀幹淨,無液體(tǐ);
b) 将 30 支采血管放入水平離心機中(zhōng),注意離心機的平衡;
c) 設置離心參數,當轉速穩定時的最大相對離心力為(wèi) 3000g,離心時間為(wèi) 10min(例:離心半徑 為(wèi) 17cm,轉速為(wèi) 4000r/min,離心 10min);
d) 離心機停止後,小(xiǎo)心取出采血管;
e) 觀察采血管外壁是否有(yǒu)液體(tǐ)滲漏。
4.4 血清分(fēn)離管纖維蛋白挂壁4.4.1 要求
按照 4.4.2.2 的步驟進行測試,血清分(fēn)離管離心後不應出現纖維蛋白挂壁。注:若采用(yòng)分(fēn)離膠促凝管進行測試時,可(kě)以增加評估分(fēn)離膠的性能(néng)。
4.4.2 驗證方法4.4.2.1 儀器
考察管;采血針;醫(yī)用(yòng)消毒用(yòng)具(jù);40 個靜脈血标本;水平離心機;試管架。
4.4.2.2 步驟
a) 試驗條件:溫度為(wèi) 18°C~25°C,壓力為(wèi)當地的環境大氣壓;
b) 将采血管進行編号,考察管依次為(wèi) 1~40;
c) 按照标準的采血操作(zuò)流程進行采血,每個人采 1 支管,采血後立刻進行搖勻(按照制造商(shāng)規定 的搖勻次數),然後豎直放置在試管架上靜置;
4
d) 當全部 40 個人采完血後,開始記時;
e) 30min 後将 40 支管一次全部放入離心機中(zhōng)進行離心操作(zuò);
4.5 溶血情況4.5.1 要求
按照 4.4.2.2 的步驟進行測試,采血管采血後進行離心,不應出現溶血(排除臨床原因)。4.5.2 驗證方法
a) 按照 4.4.2.1、4.4.2.2a)~f)的内容進行操作(zuò);
b) 離心觀察并記錄 40 支考察管的血清或血漿質(zhì)量情況。
4.6 抗凝管的凝血情況4.6.1 要求
按照 4.4.2.2 的步驟進行采血,抗凝管中(zhōng)充分(fēn)混勻的血液标本在顯微鏡下觀察應無凝塊。4.6.2 驗證方法
a) 按照 4.4.2.1、4.4.2.2 a)~d)的内容進行操作(zuò);
b) 3h 後用(yòng)顯微鏡對 40 個标本進行觀察是否有(yǒu)凝塊。
注:4.4~4.6三項指标的評價可(kě)以結合臨床性能(néng)評價一起進行測試。
4.7 無菌4.7.1 要求
真空采血管内腔應無菌,即按照 4.7.2.3 的步驟進行測試,結果判定為(wèi)合格。
4.7.2 驗證方法4.7.2.1 試劑
75%酒精(jīng)溶液;75%酒精(jīng)棉球;硫乙醇酸鹽液體(tǐ)培養基;改良馬丁培養基;0.9%無菌氯化鈉溶液。
4.7.2.2 儀器
隔水式恒溫培養箱;生化培養箱;生物(wù)顯微鏡;自動高壓滅菌器;電(diàn)熱恒溫幹燥箱;酒精(jīng)燈;火機; 鑷子。
4.7.2.3 步驟
a) 抽樣:任意抽取需考察的采血管 10 支;
b) 供試液的制備:含液體(tǐ)的采血管如凝血功能(néng)檢測管、血沉檢測管,以其管内含有(yǒu)的液體(tǐ)為(wèi)供試 液;不含液體(tǐ)的¢16mm×100mm 采血管用(yòng) 5mL0.9%無菌氯化鈉溶液進行振蕩溶解,作(zuò)為(wèi)供試液 備用(yòng);不含液體(tǐ)的¢13mm×100mm 的采血管用(yòng) 4mL0.9%無菌氯化鈉溶液進行振蕩溶解,作(zuò)為(wèi)供
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WS/T 224—2018試液備用(yòng);不含液體(tǐ)的¢13mm×75mm 的采血管用(yòng) 3mL0.9%無菌氯化鈉溶液進行振蕩溶解,作(zuò)為(wèi)
供試液備用(yòng);
c) 供試樣品的培養:将供試液置于裝(zhuāng)有(yǒu)硫乙醇酸鹽液體(tǐ)培養基、改良馬丁培養基的容器中(zhōng)進行培 養;
d) 培養及觀察:上述含培養基的容器按規定的溫度(細菌 30°C~35°C,真菌 23°C~28°C)培養14d。培養期間應逐日觀察并記錄是否有(yǒu)菌生長(cháng)。若出現異常時則每天上、下午各觀察一次。 如在加入供試品後或在培養過程中(zhōng),培養基出現渾濁,培養 14d 後,不能(néng)從外觀上判斷有(yǒu)無菌 生長(cháng),可(kě)取該培養液适量轉種至同種新(xīn)鮮培養基中(zhōng)或劃線(xiàn)接種于斜面培養基上,細菌培養 2d,真菌培養 3d,觀察接種的同種新(xīn)鮮培養基是否再出現渾濁或斜面上有(yǒu)無菌生長(cháng);或用(yòng)接種環 取培養液塗片,染色,鏡檢,進行判斷是否有(yǒu)菌生長(cháng)。
e) 陰性對照:取同一批号空白硫乙醇酸鹽流體(tǐ)培養基、改良馬丁培養基各一支作(zuò)為(wèi)陰性對照。陰 性對照不得有(yǒu)菌生長(cháng)。
f) 陽性對照:在生物(wù)安(ān)全櫃操作(zuò),接種金黃色葡萄球菌至營養肉湯培養基中(zhōng),30°C~35°C培養18h~24h。用(yòng) 0.9%無菌氯化鈉溶液制成小(xiǎo)于 100CFU/mL 的菌懸液。菌懸液制備後保存在 2°C~8°C,24h 内使用(yòng)。接種 1mL 小(xiǎo)于 100CFU 的金黃色葡萄球菌菌懸液于硫乙醇酸鹽流體(tǐ)培養基中(zhōng), 應生長(cháng)良好。
g) 結果判定:當供試品管液體(tǐ)均顯澄清,陰性對照管液體(tǐ)均顯澄清,陽性對照管液體(tǐ)顯渾濁時供 試品管為(wèi)合格;當陰性對照管液體(tǐ)顯澄清,陽性對照管液體(tǐ)顯渾濁,供試品管液體(tǐ)顯渾濁時供 試品管為(wèi)不合格;當陰性對照管液體(tǐ)顯渾濁或陽性對照管液體(tǐ)顯澄清時,實驗無效。
一般情況下,應對臨床檢測報告上的檢測項目進行可(kě)比性驗證,可(kě)優先對附錄B中(zhōng)的檢測項目進行 驗證。
4.8.2 确定用(yòng)于檢測的檢測儀器
實施結果比對時,應對用(yòng)于檢測臨床樣本的檢測系統進行可(kě)比性驗證。
4.8.3 比對樣本4.8.3.1 樣本選擇
采用(yòng)來自于不同患者的臨床樣本作(zuò)為(wèi)比對樣本。
4.8.3.2 樣本濃度水平
樣本濃度應在方法的線(xiàn)性範圍内,并覆蓋醫(yī)學(xué)決定水平。分(fēn)析樣本的濃度應盡可(kě)能(néng)在線(xiàn)性範圍内均 勻分(fēn)布。
4.8.4 要求
可(kě)比性驗證的可(kě)接受标準應滿足臨床需要,同時考慮檢測系統的性能(néng)狀況。 不同項目分(fēn)析質(zhì)量要求可(kě)采用(yòng)國(guó)家認可(kě)機構設置的分(fēn)析質(zhì)量的最低标準。 采血管不同項目比對結果的相對偏倚若符合分(fēn)析質(zhì)量要求,表明考察管可(kě)滿足臨床應用(yòng)要求。
6
4.8.5 驗證方法4.8.5.1 采血管選擇
隻需使用(yòng)兩種不同的采血管一個批号的産(chǎn)品同時采血進行實驗,一種是比對管,一種是考察管。
4.8.5.2 樣本要求
至少分(fēn)析20個不同的臨床患者樣本。隻有(yǒu)在室内質(zhì)控合格的情況下,實驗室數據才有(yǒu)效。
4.8.5.3 線(xiàn)性回歸分(fēn)析4.8.5.3.1 拟合線(xiàn)性回歸方程
以比對管的檢測值為(wèi)X,考察管的檢測值為(wèi)Y進行線(xiàn)性拟合。利用(yòng)所有(yǒu)樣本測定的有(yǒu)效數據,線(xiàn)性回 歸方程見式(3):
式中(zhōng):b----直線(xiàn)的斜率;a----直線(xiàn)的截距;X----比對管的檢測值;Y----考察管的檢測值。
4.8.5.3.2 計算線(xiàn)性回歸相關系數
Y=bX+a ......................................... (3)
利用(yòng)所有(yǒu)樣本測定值進行線(xiàn)性回歸後得相關系數(以r或R2表示)。
4.8.5.3.3 線(xiàn)性回歸相關系數判定
如果r≥0.975(或R2≥0.95),則認為(wèi)選擇的數據範圍适合,數據滿足要求。該分(fēn)析的誤差可(kě)以由數 據範圍給以适當補償,并且可(kě)以采用(yòng)簡單的線(xiàn)性回歸方程來評價斜率和截距。
如果R2<0.95,那麽必須通過分(fēn)析另外一些樣品以擴大數據範圍,然後再檢查全部數據系列,如仍 然R2<0.95,則應尋找待評價方法存在的缺陷,糾正後重新(xīn)進行試驗。
4.8.5.4 相對偏倚的計算及判定4.8.5.4.1 相對偏倚的計算
将醫(yī)學(xué)決定水平(以Xc表示)代入式(3),得到預期偏倚(以Bx表示),其計算見式(4):Bx=a+(b-1)Xc ..................................... (4)
式中(zhōng):Xc----醫(yī)學(xué)決定水平;Bx----預期偏倚;
Rb=Bx/Xc×100% ...................................... (5)
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Rb----相對偏倚。
4.8.5.4.2 相對偏倚的判定
不同檢測項目的相對偏倚應符合國(guó)家認可(kě)機構設置的分(fēn)析質(zhì)量的最低标準。
4.8.6 可(kě)比性驗證結果不符合要求的處理(lǐ)措施
對于不符合可(kě)比性驗證要求的采血管,應分(fēn)析原因,必要時采取相應的糾正措施,其後應對其進行 比對,确認比對結果符合分(fēn)析質(zhì)量要求。
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AA
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附錄A(資料性附錄) 真空采血管标簽及管蓋顔色國(guó)際通用(yòng)标準
采血管分(fēn)類 | 添加劑 | 附加物(wù) | 字母代号 | 标簽及管蓋顔色 |
血清分(fēn)離管 | 無c | 無 | Z | 紅色 |
促凝劑 | 無 | 無 | 紅色 | |
促凝劑 | 分(fēn)離膠 | 無 | 金黃色 | |
急診生化管 | 肝素锂 | 無 | LH | 綠色 |
肝素鈉 | 無 | NH | ||
肝素锂 | 分(fēn)離膠 | 無 | ||
肝素鈉 | 分(fēn)離膠 | 無 | ||
血常規管 | EDTAa三鉀鹽 | 無 | K3E | 紫色 |
EDTA 二鉀鹽 | 無 | K2E | ||
EDTA 二鈉鹽 | 無 | N2E | ||
核酸檢測管 | EDTA 二鉀鹽 | 分(fēn)離膠 | 無 | |
凝血功能(néng)檢測管 | 檸檬酸鈉9:1b | 無 | 9NC | 淺藍色 |
血沉管 | 檸檬酸鈉4:1b | 無 | 4NC | 黑色 |
血糖管 | 氟化物(wù)/草(cǎo)酸鹽 | 無 | FX | 灰色 |
氟化物(wù)/EDTA鹽 | 無 | FE | ||
氟化物(wù)/肝素鹽 | 無 | FH | ||
微量元素管 | 肝素锂 | 無 | 無 | 深藍色或綠色 |
ACD管 | ACD溶液d | 無 | ACD | 金黃色 |
注 1:标簽的色标并不是指整個标簽的全部顔色,而僅指其色彩部分(fēn)。 注 2:管蓋顔色是指管蓋的外觀顔色,不包括管蓋内部的塞子顔色。 | ||||
a EDTA是乙二胺四乙酸(Ethylenediaminetetraacetic acid)的慣用(yòng)縮寫。 |
9
BB
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附錄B(資料性附錄) 臨床檢測項目
編号 | 檢測項目 | 縮寫 | 血清分(fēn)離管 | 急診生化管 | ||||
1 | 丙氨酸氨基轉移酶 | ALT | √ | √ | ||||
2 | 天門冬氨酸氨基轉移酶 | AST | √ | √ | ||||
3 | 堿性磷酸酶 | ALP | √ | √ | ||||
4 | 肌酶激酶 | CK | √ | √ | ||||
5 | 肌酶激酶-同工(gōng)酶 | CK-MB | √ | √ | ||||
6 | 乳酶脫氫酶 | LDH | √ | √ | ||||
7 | γ-谷氨酰基轉移酶 | GGT | √ | √ | ||||
8 | 鈉 | Na | √ | √ | ||||
9 | 鉀 | K | √ | √ | ||||
10 | 鈣 | Ca | √ | √ | ||||
11 | 鎂 | Mg | √ | √ | ||||
12 | 甘油三酯 | TG | √ | √ | ||||
13 | 總膽固醇 | TC | √ | √ | ||||
14 | 高密度脂蛋白膽固醇 | HDL-C | √ | √ | ||||
15 | 低密度脂蛋白膽固醇 | LDL-C | √ | √ | ||||
16 載脂蛋白 A1 Apo A1 | √ | √ | ||||||
17 載脂蛋白 B1 Apo B1 | √ | √ | ||||||
18 葡萄糖 GLU | √ | √ | ||||||
19 尿素氮 BUN | √ | √ | ||||||
20 尿酸 UA | √ | √ | ||||||
21 肌酐 Cr | √ | √ | ||||||
22 總蛋白 TP | √ | √ | ||||||
23 白蛋白 Alb | √ | √ | ||||||
24 甲胎蛋白 AFP | √ | - | ||||||
25 癌胚抗原 CEA | √ | - | ||||||
26 人絨毛膜促性腺激素 HCG | √ | - | ||||||
27 前列腺特異性抗原 PSA | √ | - | ||||||
28 鐵蛋白 Ferritin | √ | - | ||||||
29 遊離前列腺特異性抗原 F-PSA | √ | - | ||||||
30 總三碘甲狀腺原氨酸 TT3 | √ | - |
10
表 B.1 血清管和急診生化管的檢測項目(續)
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編号 | 檢測項目 | 縮寫 | 血清管 | 急診生化管 |
31 | 遊離三碘甲狀腺原氨酸 | FT3 | √ | - |
32 | 總甲狀腺素 | TT4 | √ | - |
33 | 遊離甲狀腺素 | FT4 | √ | - |
34 | 促甲狀腺素 | TSH | √ | - |
35 | 肌紅蛋白 | Myoglobin | √ | - |
36 | 肌鈣蛋白 I | Troponin I | √ | - |
37 | 肌鈣蛋白 T | Troponin T | √ | - |
注:“√”标示選擇檢測指标,“-”表示可(kě)選擇。 |
表 B.2 血常規管的檢測項目
編号 | 檢測項目 | 縮寫 |
1 | 白細胞計數 | WBC |
2 | 中(zhōng)性粒細胞數 | NEUT# |
3 | 淋巴細胞數 | LYM# |
4 | 單核細胞數 | MONO# |
5 | 嗜酸性粒細胞數 | EOSIN# |
6 | 嗜堿性粒細胞數 | BASO# |
7 | 紅細胞計數 | RBC |
8 | 血紅蛋白測定 | Hb |
9 | 紅細胞比積測定 | HCT |
10 | 平均紅細胞體(tǐ)積 | MCV |
11 | 平均紅細胞血紅蛋白含量 | MCH |
12 | 平均紅細胞血紅蛋白濃度 | MCHC |
13 | 血小(xiǎo)闆計數 | PLT |
表 B.3 核酸檢測管、微量元素管、血糖管、血沉管的檢測項目
編号 | 微量元素管 | 核酸檢測管 | 血糖管 | 血沉管 | ||||
檢測項目 | 縮寫 | 檢測項目 | 縮寫 | 檢測項目 | 縮寫 | 檢測項目 | 縮寫 | |
1 | 鉛 | Pb | 乙肝病毒 | HBV | 血糖 | GLU | 血沉 | ESR |
2 | 镉 | Cd | 丙肝病毒 | HCV |
編号 檢測項目
1 血漿凝血酶原時間
2 纖維蛋白原
3 活化部分(fēn)凝血活酶時間
4 凝血酶時間
表 B.4 凝血功能(néng)檢測管的檢測項目
PT FIB APTT TT
縮寫
11
參考文(wén)獻
[1] Validation and Verification of Tubes for Venous and Capillary Blood Specimen Collection; Approved Guideline. CLSI document GP34-A.
[2] Method Comparison and Bias Estimation Using Patient Samples; Approved Guideline – Second Edition (Interim Revision). CLSI document EP09-A2-IR.
[3] Procedures for the Handling and Processing of Blood Specimens for Common Laboratory Tests; Approved Guideline – Fourth Edition. CLSI document GP44-A4.
[4] User Verification of Performance for Precision and Trueness; Approved Guideline – Second Edition. CLSI document EP15-A2.
[5] Tubes and Additives for Venous and Capillary Blood Specimen Collection; Approved Standard – Sixth Edition. CLSI document GP39-A6.
[6] YY/T 0314—2007 一次性使用(yòng)人體(tǐ)靜脈血樣采集容器
[7] YY/T 0617—2007 一次性使用(yòng)人體(tǐ)末梢血樣采集容器
[8] CNAS—CL38—2012 醫(yī)學(xué)實驗室質(zhì)量和能(néng)力認可(kě)準則在臨床化學(xué)檢驗領域的應用(yòng)說明
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WS/T 224—2018
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